Опсины

Трехмерная структура бычьего родопсина. Семь трансмембранных доменов показаны разными цветами. Хромофор показан красным цветом.

Опсины (G-белки фотосинтеза и зрительные пигменты) — группа рецепторных белков семейства ретинолидов с молекулярной массой 35-55 кДа, связанных с мембраной G-протеинов (G protein-coupled). Обнаружены в мембране галобактерий, светочувствительных фоторецепторных клетках беспозвоночных и позвоночных животных (сетчатка), фотосинтезирующих организмах, в светочувствительном пигменте меланофоров кожи земноводных, радужке лягушки и т.д.

Опсины играют важную роль в зрительном, обонятельном и вомероназальном восприятии у животных, а также в формировании циркадных ритмов.

Пять групп опсинов вовлечены в зрительный процесс, обеспечивая трансформацию сигнала от фотона — к электрохимическому нервному импульсу (первый шаг в процессе зрительной трансдукции). В сетчатке млекопитающих найдены и другие опсины, например меланопсин (пигмент клеток-меланофоров). В форме бактериородопсина опсины обнаружены в бактериях (эволюция опсинов).

Общие сведения

Опсины — «змеевидные» белки, связаные с G-белками, имеют сходную, семидоменную структуру. Они выделены и исследованы у многих позвоночных и беспозвоночных животных. Опсины принадлежат к большому надсемейству эволюционно родственных белков, и включают зрительные, обонятельные рецепторные белки, а также большое количество синаптических рецепторных молекул.

Пять групп опсинов принимают участие в процессе зрительного восприятия, превращении света в электрохимический сигнал, и являются первым этапом в каскаде зрительной фототрансдукции. В целом эти опсины можно разделить на две группы:

• Род-опсины (от Rod — палочка);
• Кон-опсины (от Con — колбочка);

Меланопсин

Рис.2.

Меланопсин — фотопигмент, один из опсинов, непосредственно участвует в зрительном процессе, регуляции циркадных ритмов; он находится в специализированных фоточувствительных ганглиальных клетках сетчатки глаза, в коже и мозговых тканях живонтных. Этот зрительный пигмент (фотопигмент) был обнаружен в ганглиальных клетках ipRGC сетчатки глаза млекопитающих.

Мелаопсин принимает участие в режиме «сна-бодрствования», супрессии эпифизального мелатонина у человека; участвует в зрачковом рефлексе, в формировании зрительных образов.

• Рис. 2. Melanopsin ген. (a) Выведена последовательность аминокислоты и предсказана вторичная структура меланопсина. Заштрихованная область указывает трансмембранные области. (b) Филогенетическое дерево, сравнивающее меланопсин с представительными опсинами (opsins) позвоночных и нехарактерных разновидностей (L, чувствительных к "длинной длине волны" opsin; M1, синяя-подобная — "средняя длина волны" opsin; M2, зелено-подобная — "средняя длина волны" opsin; P, шишковидныйopsin; Rh, rhodopsin; S, "короткая длина волны, чувствительны все клетки" от цыпленка; VA, позвоночное животное, древнее opsin-от Атлантический лосось). (c) Hydropathy анализ для вторичного предсказания структуры. Приспособленный от Provencio и др. 1998.

Уникальная способность клеток ipRGCs, чтобы ответить на свет, происходит только за счёт выделенного фотопигмента меланопсина (melanopsin). Первоначально клонированный от лягушки кожный melanophores, melanopsin ген (OPN4) имеется orthologs у многих млекопитающих разновидностях, включая мышей, обезьян и людей (Provencio, Родригес и др. 2000). Анализ гидрофобной последовательности аминокислоты melanospin предсказывает, что 7-трансмембранная структура, обычная во всех Белках-G , которая объединила рецепторы (рис. 2a, 2c) (Provencio, Jiang и др. 1998). Мкланопсин универсален, он больше похож на беспозвоночный rhabdomeric opsins (r-opsins), чем ресничный opsins разновидностей позвоночных (c-opsins), при чём он больше, в качестве меланопсина может сигнализировать о свете посредством различных механизмов, чем используемые позвоночными палочками и колбочками фотопигменты (рис. 2b) (Provencio, Jiang и др. 1998).

Хотя первые исследования ipRGCs настоятельно предложили melanopsin как фотопигмент в клетках, выполняющий роль для группы клеток синего цвета, поглощающего известным flavoproteins, но только поскольку cryptochromes не мог быть первоначально исключен (Berson 2007). Функцию Cryptochromes в качестве циркадных фотопигментов у беспозвоночных он быстро одобрил их в сфере функционирования у млекопитающих как циркадные фотопигменты (Kavakli и 2002 Sancar; Ван Джелдер, Gibler и др. 2002). Однако, теперь имеется подавляющее доказательство того, что melanopsin является фотопигментом в клетках ipRGCs, и таким образом является истинным циркадным фотопигментом. Когда melanopsin ген был удален при помощи трансгенных методов в мышах (мыши нокаута), то относящиеся к сетчатке глаза клетки нервного узла, помеченные от SCN, больше не могли сигнализировать свет(рис. 3) (Лукас, Hattar и др. 2003). Кроме того, животные, с введенным melanopsin-геном (мутантом) показывают дефициты в многократных визуальных отражениях, типа сжатия зрачка и восприятия света (Панда, Sato и др. 2002; Рубин, Brennan и др. 2002; Лукас, Hattar и др. 2003; Панда, Provencio и др. 2003).

Как дальнейший тест, Турция и. ал использовал множество плоских мультиэлектродов, которые позволяют делать запись extracellularly от множеств клеток нервного узла сетчатки глаза сразу, позволяя изолировать многократные легкие ответы от клеток ipRGCs. Напрмер, клетки сетчатки глаза мышей нокаута от melanopsin не показали никаких свойственных фотоответов от клеток нервного узла (Турция, Zhang и др. 2005). Несмотря на эти доказательства, все еще были споры относительно способности melanopsin функционировать в качестве истинного фотопигмента. Но споры были твердо погашены на примере ряда изящных экспериментов, где посредством melanopsin-гена было показано, что при многократных опытах на разных клетках, которые являются обычно нечувствительными к свету, они сильно отвечали на свет. Это указывает на способность melanopsin функционировать как bonafide фотопигмент (рис. 3) (Melyan, Tarttelin и др. 2005; Панда, Nayak и др. 2005; Qiu, Kumbalasiri и др. 2005).

Полученная мутация гена, выражающего melanopsin, была также использована в риске определения наличия «Сезонного Эмоционального (ГРУСТНОГО)Беспорядка».

Рис.3. 3. mice are healthy. Adapted from Lucas et al. 2003 and Qui et al. 2005.

• Рис. 3. Свидетельство меланопсина — фотопигмента фоторецептора ipRGC. Где:

(a)Трансфекция клеток HEK293 (зеленое крайне левое изображение) с melanopsin (красное среднее изображение, сверхположенные красные и зеленые изображения в далекой правильной группе) делает их фоточувствительными (крайне левый след). Средства управления Untransfected (далекие правильные следы) не показали такого ответа, чтобы осветить в различном intensities.

(b) клетки нервного узла retrolabeled от SCN в мышах с одной копией melanopsin гена (главный след, швабра +/-) имеют здравые свойственные легкие ответы, тогда как помеченные клетки нервного узла от мышей, полностью испытывающих недостаток melanopsin, не показывают никакой свойственной фоточувствительности, чтобы осветить (швабра-/-следоснования). Вставка в ответе показов следа основания, чтобы направить инъекцию потока, показывая помеченные клетки от швабры-/-здоровой мыши. Приспособленная Лукасом и др. 2003 и Qui и др. 2005.

Т.о., последние исследования меланопсина (см. рис. 2,3) (даже на генетическом уровне) исключают существующие сомнения, предположения о главной функции фотопигмента меланопсина. Его участие в формировании циркадных ритмов и в зрачковом рефлексе — это доказанный факт. [Замечание необходимое].

Опсины и фоторецепторы

Рис.1.

Формирование оптического изображение в процессе зрения у позвоночных животных связано с находящимися к сетчатке глаза колбочек (cone) и палочек (rod). Палочки продолжают работать при очень слабых уровнях освещения т. н. сумеречное зрение. Они чрезвычайно чувствительны и могут сигнализировать о поглощении одиночных фотонов. Колбочки намного менее чувствительны свету, чем палочки. Они учавствуют в цветном зрении при достаточно ярком (дневном) свете (иллюстрация 1).

• Рис. 1. Светлопольные изображения фоторецепторов (палочки и колбочки), выделеных из сетчатки саламандры. Фототрансдукция имеет место во внешней доле, в то время как митохондрии плотно упакованы в эллипсоиде.

В последние десятилетия получены новые результаты при исследованиях при микроскопии с большей разрешающей способностью, на живых клеткак, особенно на флюоресцентных наноскопах, когда полученная трёхмерная цветная информация клеток на молекулярном уровне раскрывает ранее только предполагаемые вопросы, например, цветного зрения, важных процессов фототрансдукции сигналов. С конца 1970-х гг. использовались экспериментальные методы введения электрода в сетчатку, для записи потенциалов (Baylor и др., 1979a). Фоторецепторы земноводных млекопитающих (включая приматов) могут быть исследованы этим методом. Бычья сетчатка раньше была частым объектом в исследованиях из-за изобилия доступной ткани. Позже мышь стала более лучшей моделью для исследования с использованием появившихся генных методов. В сочетании с электрофизиологическими методами, опыты на мышах с определённым геномом дают более точные результаты для объяснения функции ключевых белков фототрансдукции в естественных условиях, что на большом объеме новой информации дали возможность установить ранее предполагаемые принципы, лежащие в основе фототрансдукции сигнала в естественных условиях, увеличения, восстановления и адаптации фотоответов палочка/колбочка (Таблица 1, рис. 2,3).

Таблица 1.

Таблица 1. Список основных белков, вовлеченных фототрансдукцию в палочках и колбочках мыши, которые были утеряны, или мутировали 1) из-за высокого ограничения, но не все генетически проектируемые линии мыши перечислены. Для включенных только перечислены самые существенные фенотипы (в тексте дано более полное описание). 2) Аррестин4 также называют колбочковым аррестином, (X-arrestin) (Gurevich и Gurevich, 2006; Никонов и др., 2008) Аррестин — белок сетчатки, контролирующий светочувствительность родопсина путем связывания с ним; в геноме человека ген, кодирующий аррестин, локализован на участке q24-37 хромосомы 2.

Опсины и зрительные пигменты

Опсины и другие зрительные пигменты, найденные в клетках фоторецепторов в сетчатках глаз. Опсин образован в виде связки из семи трансмембранных альфа-спиралей, связанных шестью петлями. В клетках палочек молекулы опсинов (род-опсинов) вложены в мембраны дисков, которые размещаются полностью в клетке. «Голова» N-конечной-остановки молекулы простирается внутрь диска, а «хвост» с C-радикалом простирается в цитоплазме клетки. В клетках колбочки (c кон-опсинами) диски определены плазменной мембраной клетки так, что голова N-конечной-остановки простирается вне клетки. Опсины сетчатки глаза ковалентно связаны с лизином на трансмембранной спирали, самой близкой C-конечной-остановки белка через Шиффовы основания. Формирование изменений Шиффова основания вовлекает удаление атома кислорода от относящегося к сетчатке глаза и двух водородных атомов от свободной группы аминокислоты лизина, давая H2O. Ретинилиден — двухосновная группа, сформированная так, что удаляет атом кислорода относящегося к сетчатке глаза, и потому опсины назвали ретинилиденовыми (retinylidene) белками. Бычий родопсин содержит 348 аминокислотных остатков. Соответствующий хромофор сетчатки глаза связывается с Lys296.

Опсины исключительно часто встречается в сетчатке глаза млекопитающих, у других групп животных дополнительно были найдены четыре хромофора с близкими свойствами. Это: (3,4)-дидегидроретиналь, (3R) — 3-гидроксиретиналь, (3S) — 3-гидроксиретиналь, и (4R) — 4-гидроксиретиналь. Много рыб и амфибий, используют также хромофор дегидроретиналь — (3,4)-дидегидроретиналь. У всех насекомых при исследовании выявлены энантиомер R 3-hydroxyretinal, за исключением хромофора dipteran, как у Cyclorrhapha, так называемых более крупных мух. Энантиомер R должен ожидаться, если 3-hydroxyretinal произведен непосредственно от каротиноидов-ксантофилов. Cyclorrhaphans, включая Дрозофилу, использование (3S) — 3-hydroxyretinal. Кальмар светлячка, как находили, использовал (4R) — 4-h}droxyretinal.

Классификация опсинов

Общие cведения о химии опсинов

Большинство опсинов — ретиноиды. Существует множество вариантов белков-опсинов; в частности, они различны у разных видов животных. Некоторые из них приведены в следующей таблице.

Ретиналь	Тип опсина	Пигмент	Длина волны света с макс. поглощением λMax, nm	Beispiele für das Vorkommen
11-cis-Retinal	Скотопсин	Родопсин	500	Человек, Wirbeltiere, Gliederfüßer, Weichtiere
11-cis-Retinal	UV-Фотопсин	UV-Йодопсин	340	Honigbiene
11-cis-Retinal	S-Фотопсин	S-Йодопсин	430	Affen
11-cis-Retinal	M-Photopsin	M-Iodopsin	535
11-cis-Retinal	L-Photopsin	L-Iodopsin	565	Altweltaffen
11-cis-Retinal	XL-Photopsin	XL-Iodopsin	620	Vögel
3,4-Dehydro-11-cis-Retinal	Skotopsin	Порфиропсин	520	Süßwasserfische, Амфибии
3,4-Dehydro-11-cis-Retinal	UV-Photopsin	UV-Цианопсин	360
3,4-Dehydro-11-cis-Retinal	S-Photopsin	S-Cyanopsin	420
3,4-Dehydro-11-cis-Retinal	M-Photopsin	M-Cyanopsin	530
3,4-Dehydro-11-cis-Retinal	L-Photopsin	L-Cyanopsin	580
3,4-Dehydro-11-cis-Retinal	XL-Photopsin	XL-Cyanopsin	620
9-cis-Retinal	Skotopsin	Iso-Rhodopsin	485
9-cis-Retinal	Photopsin	Iso-Iodopsin	515
3,4-Dehydro-9-cis-retinal	Skotopsin	Iso-Porphyropsin	510
3,4-Dehydro-9-cis-retinal	Photopsin	Iso-Cyanopsin	575
13-cis-Retinal	Bakterien-Opsin	Bakteriorhodopsin, «Halorhodopsin»	560	Halobakterien (lichtgetriebene Protonenpumpe, siehe (Chemiosmotische Kopplung)
		Melanopsin	485	Mensch, retinale Ganglienzellen

Опсины животных

.

└─o 
  ├─o Меланопсины / Опсины, связанные с Gq
  └─o 
    ├─o 
    │ ├─o Энцефалопсины / tmt-опсины
    │ │
    │ └─o Опсины позвоночных (зрительные и не связанные со зрительным восприятием)
    └─o
      ├─o Опсины, связанные с Go
      └─o 
        ├─o Нейропсины
        └─o 
          ├─o Перопсины
          │
          └─o Фотоизомеразы

Опсины позвоночных — нейропсины

.

└─o Пигменты древних позвоночных
  ├─o 
  │ ├─o Пигменты группы P
  │ │
  │ └─o Пигменты группы M/LWS
  └─o 
    ├─o Пигменты группы SWS1
    └─o
      ├─o Пигменты группы SWS2
      └─o 
        ├─o Пигменты группы RH2 
        │
        └─o Пигменты группы RH1 

Следующие типы опсинов идентифицированы в тканях млекопитающих. Невзирая на некоторое генетическое сходство этих соединений и изомеров, их функции до конца не установлены. ^{[источник?]}

Название	Ген	Примечания
Меланопсин	OPN4	best studied novel opsin involved in circadian rhythms and pupillary reflex
Пинопсин (Pineal Opsin - Pinopsin)		wide range of expression in the brain, most notably in the pineal region
Опсин древних позвоночных (Vertebrate Ancient (VA) opsin)		имеет 3 изоформы: короткую VA short (VAS), среднюю VA medium (VAM), и длинную VA long (VAL). Экспрессируется во внутренней сетчатке, в горизонтальных и амакринных клетках
Парапинопсин (Parapinopsin (PP) Opsin)
Несетчаточный (экстраокулярный) родопсин-подобный опсин (Rhodopsin-Like Opsins, Exo-Rh)		Родопсин-подобный белок
Энцефалопсин (Панопсин)	OPN3	originally found in human and mice tissue with a very wide range of expression (brain, testes, heart, liver, kidney, skeletal muscle, lung, pancreas and retina)
Teleost Multiple Tissue (TMT) Opsin		Teleost fish opsin with a wide range of expression
Перопсин (Peropsin) «Retinal pigment epithelium-derived rhodopsin homolog»	RRH	expressed in the retinal pigment epithelium (RPE) cells
Retinal G protein coupled receptor	RGR	expressed in the retinal pigment epithelium (RPE) and Müller cells
Нейропсин	OPN5

Опсины первого и второго рода

Классифицируют два типа опсинов — первого и второго типов. Сходство в их структуре и функции указывает на их конвергентное происхождение у бактерии и животных.

Опсины прокариот первого типа

Опсины прокариот имеют семь трансмембранных доменов, сходные по структуре с рецепторами, связанными с G-белками у эукариот. Несмотря на определённое сходство их строения, нет никаких подтверждений того, что они имеют эволюционное сходство; по-видимому, эти белки эволюционировали независимо друг от друга.

Некоторые бактерии фиксируют углерод без участия хлорофилла, используя для этого опсины первого типа (протеородопсины, галородопсины и бактериородопсины). Галобактерии используют фоточувствительные родопсины в процессах фототаксиса, в этом процессе участвуют, связанные с плазматическими мембранами, белки системы передачи сигнала, не имеющие отношения к G-белкам.

Группы опсинов второго типа

Два семейства опсинов позвоночных классифицируют по различиям в экспрессии и эволюционной истории. Родопсины, которые участвуют в сумеречном зрении, являются высокочувствительными к свету опсинами, и располагаются в палочках сетчатки, но с относительно невысокой плотностью, не обеспечивающей достаточной разрешающий способности глаза. Опсины колбочек расположены в клетках колбочек сетчатки, они участвуют в цветном зрении, и имеют меньшую светочувствительность, чем опсины палочек. Зато их плотность в сетчатке выше, поэтому они обеспечивают более высокую разрешающую способность дневного зрения. Опсины колбочек также классифицируют по длине волн максимального поглощения света. Также для классификации часто сравнивают аминокислотные последовательности опсинов разных групп.

Оба подхода позволяют выделить четыре основных группы опсинов. У человека представлен следующий набор зрительных белков:

• Родопсин (Rh1, OPN2, RHO) — экспрессируется в палочках, участвует в ночном зрении
• Четыре типа опсинов колбочек (фотопсины) — экспрессируются в колбочках, участвуют в цветном зрении
  • Чувствительные в области длинных волн (Long Wavelength Sensitive, LWS, OPN1LW) опсины — λ_max в красном диапазоне
  • Чувствительные в области волн средней длины (Middle Wavelength Sensitive, RH2 или MWS) опсины — λ_max в зеленой части спектра
  • Чувствительные в области коротких волн 2 (SWS2) опсины — λ_max в синем диапазоне
  • Чувствительные в области коротких волн 1 (SWS1) опсины — λ_max в фиолетовой и ультрафиолетовой части диапазона

Для последних трех опсинов у человека известны связанные с ними гены: OPN1MW, OPN1MW2, и OPN1SW.

Разные животные могут обладать различными наборами фоторецепторных белков, спектры поглощения которых отличаются от спектров поглощения белков свойственных человеку. В связи с этим восприятие света и цвета у человека и животных, должно отличается. Некоторые насекомые, например, могут видеть и в ультрафиолетовом диапазоне, в то время, как у других живых существ чувствительность фоторецепторов может быть сдвинута в инфракрасную область. Считается, что животные с одним типом опсинов видят окружающий мир монохромным (черно-белым).

Структура и функции

Опсины ковалентно связаны с ретиналем — альдегидной формой витамина А, связывание идет через конденсацию альдегидной группы ретиналя с ε-аминогруппой остатка лизина в седьмой трансмембранной альфа-спирали с образованием основания Шиффа. У позвоночных хромофор находится в цис-форме. Поглощение фотона приводит к изменению конформации в транс-состояние. Фотоизомеризация вызывает конформационные изменения в белке опсине и активирует каскад фототрансдукции.

Опсины содержат семь трансмембранных альфа-спиральных доменов, соединенных тремя внеклеточными и тремя цитоплазматическими петлями. Многие остатки аминокислот являются эволюционно консервативными между разными группами опсинов. Остаток Lys296 консервативен во всех известных опсинах и служит сайтом связывания основания Шиффа с хромофором.

Механизмы зрительных процессов с участием опсинов

Сначала даётся краткое описание структуры и развития фоторецепторов мыши, сопровождаемых резюме недавних исследований фототрансдукции палочки с акцентом на информацию, подбираемой от образцов мыши. В конце, будет упомянут недавний прогресс в обучающихся колбочках мыши.

Структура палочек и колбочек

Палочки составляют ~97 % фоторецепторов сетчатки глаза мыши, колбочки — остальное (Картер-Доусон и LaVail, 1979). Методика измерений параметров клеток фоторецепторов мыши как и фоторецепторов приматов аналогична (Стол 2 и иллюстрация 2). Внешняя доля — приблизительно 1.4 мкм. в диаметре и 24 мкм. в длину для палочек, и, соответственно, приблизительно 1.2 мкм. и 13 мкм. для колбочек. Эти величины являются значительно меньшими, чем у фоторецепторов земноводных (иллюстрация 1).

Таблица 2.

• Таблица 2. Физические измерения внешней доли палочек мыши и колбочек Саламандры, фоторецепторы примата включены для сравнения.

Палочки и колбочки имеют четыре первичных структурных/функциональных областей: внешняя доля, внутренняя доля, тело ячейки и синаптический терминал. Внешняя доля связана с внутренней долей через тонкую соединительную ресницу. Внешняя доля является заполненной плотным прозрачным веществом мембранных дисков (иллюстрации 2 и 3), разделённой промежутками в приблизительно в 28 нм. Диски несут визуальный пигмент (rhodopsin в палочках и разновидности пигментов колбочки в колбочках) и других компонентах трансдукции или как трансмембранные или периферийные мембранные белки (иллюстрация 3). Визуальный фотопигмент — самый насыщенный белок во внешней доле (мембране). Важность визуального пигмента как главного структурного компонента демонстрируется у мыши rhodopsin-нокаута, палочке, внешние доли которой не в состоянии сформироваться (Humphries и др., 1997; Лем и др., 1999). Фоторецепторы палочки этой мыши — выродившийся сопровождаемый представитель колбочек. Упаковочная плотность молекул пигмента на дисках необычно однородна поперек различных позвоночных разновидностей, содержащихся на площади ~25000 мм², соответствуя концентрации ~ 3mM (Harosi, 1975). Общее количество молекул пигмента во внешней доле может таким образом быть вычислено примерно от ее объема конверта. Плотный стек дисков очень увеличивает вероятность захвата фотона. Интересное различие между палочками и колбочками — это то, что диски палочки(за исключением возникающих дисков в основе внешней доли) полностью усвоены и поэтому физически отдельные от плазменной мембраны, тогда как диски колбочки остаются свёрнутыми плазменной мембраной. Открытые диски колбочки предлагают намного большую поверхностную область для быстрых потоков веществ между внешностью клетки и интерьером, по типу передачи хромофора для регенерации фотопигмента и быстрой динамики кальция в течение световой адаптации.

Рис.3.

Рис.2.

• Рис. 2. Низкая чувствительность палочек и колбочек обезьяны с расширением внешних дисков (мембран) доли.
• Рис.3. Схематическая диаграмма rhodopsin во внешних дисках (мембран) доли.

Внутренняя доля фоторецепторов содержит endoplasmic сеточку и аппарат Golgi. Это также упаковано mitochondria, близко, смежно с внешней долей (иллюстрации 2 и 3), чтобы обеспечить высокий спрос на метаболическую энергию, связанную с фототрансдукцией. Все белки, предназначенные для внешней доли, должны пройти через узкую зону соединительной ресницы между внешним и внутренними долями.

Синаптический терминал передает световой сигнал к нейронам второго уровня в сетчатке: к биполярным и горизонтальным ячейкам. В темноте есть устойчивый внутренний поток («темный поток») через проводимость катиона на мембране внешней доли (Hagins и др., 1970), деполяризуя палочку или колбочку и поддерживая устойчивый синаптический выпуск глутамата. Свет закрывает эту проводимость катиона («светочувствительная» проводимость, состоя из cGMP-gated каналов) служит, чтобы остановить темный поток и произвести мембранную гиперполяризацию как ответ. Эта гиперполяризация уменьшает или заканчивает темный глутаматный выпуск. Сигнал далее обрабатывается другими нейронами в сетчатке прежде, чем передаётся в высшие отделы зрительных центров в мозге.

Зрительные пигменты палочек и колбочек мыши

Некоторые исследователи до сих пор ошибочно считают, что наличие определённого числа опсинов в тканях сетчатки должно означать и существование такого же числа колбочек (видимо исходя из предположения: одна колбочка — один опсин). Подтверждения этой догадке так и не получено. Наоборот доказано, что в колбочке одновременно может находится несколько различных опсинов входящих в состав светочувствительных пигментов.

Несмотря на это, по прежнему продолжаются попытки объяснения механизмов цветовосприятия, основанных исключительно на предположении о существовании различных типов колбочек с различными пигментами, чувствительными к различным областям спектра. Пример такого подхода прослеживается и в работе, посвящённой исследованию сетчатки глаза мыши.

В сетчатке мыши обнаружены единственный пигмент палочки, rhodopsin, и два пигмента колбочек. Авторы предполагают, что пигменты чувствительные к коротковолновой области находятся только в S-(синих) колбочках, а пигменты чувствительные к длинноволновой оласти соответственно в M.-(зелёных) колбочках, с максимальной спектральной чувствительностью в 360 нм и 508 нм, соответственно. Мышь необычна в том индивидуальном составе -S и -М. пигментов колбочек, когда уровень пигмента М колбочки имеет градиент уменьшения от спинной до брюшной части сетчатки (Applebury и др., 2000).

Мышь-rhodopsin и пигменты колбочек принадлежит семье высшего качества соединенных рецепторов Белка г (GPCRs). С высокой разрешающей способностью (2.8 Å) была определена трехмерная структура банка основания бычьего rhodopsin в 2000 Palczewski и др. (иллюстрация 9b) (Palczewski и др., 2000; Stenkamp и др. 2002). Будущий вызов должен решить структуру пигментов конуса, которая намного более непостоянна, чем rhodopsin.

Иллюстрация 9.

Иллюстрация 9b.

• Иллюстрация 9. Структурная модель бычьего rhodopsin, показ семи трансмембранных компонентов и участка приложения в сетчатке глаза. Семь ТМ helices показывают пронумерованные серые коробки, и β-strands — берега показывают стрелки. Соответствующие диапазоны остатка этого ТМ helices следующие: я, 35-60; II, 71-100; III, 107—137; IV, 151—173; V, 200—225; VI, 247—277; VII, 286—306; VIII, 310—324. Расплющенная линия указывает двусернистое обязательство C110-C187, расположенное в интерфейсе между областями EC и ТМ. Переизданный от (Rader и др., 2004)
• Иллюстрация 9b. Пара стерео кристаллической структуры rhodopsin. От Stenkamp и др. 2002.

Смотри также

• Фотосинтез
• Оптогенетика
• Палочки (сетчатка)
• Колбочки (сетчатка)
• Лаборатория Р.Е.Марка

Внешние ссылки

• Review of opsins and current research: Шаблон:Cite doi
• Illustration — иллюстрации с сайта Baldwin-Wallace College
• MeSH Opsin

Шаблон:Eye proteins Шаблон:G protein-coupled receptors